Farklı vitrifikasyon yöntemleri ile dondurulan sığır oositlerinin çözdürme sonrası in vitro maturasyon başarıları
The achievements of in vitro maturation after thawing to the cryopreserved bovine oocytes by different vitrification methods
- Tez No: 522941
- Danışmanlar: DR. ÖĞR. ÜYESİ AFŞİN KÖKER
- Tez Türü: Yüksek Lisans
- Konular: Veteriner Hekimliği, Veterinary Medicine
- Anahtar Kelimeler: Çözdürme, İn vitro maturasyon, Sığır oositleri, Vitrifikasyon yöntemleri, Thawing, In vitro maturation, Bovine oocytes, Vitrification methods
- Yıl: 2018
- Dil: Türkçe
- Üniversite: Burdur Mehmet Akif Ersoy Üniversitesi
- Enstitü: Sağlık Bilimleri Enstitüsü
- Ana Bilim Dalı: Doğum ve Jinekoloji (Veterinerlik) Ana Bilim Dalı
- Bilim Dalı: Belirtilmemiş.
- Sayfa Sayısı: 172
Özet
Bu çalışmanın amacı; immatür sığır oositlerinin OPS ve SSV vitrifikasyon yöntemleriyle dondurulması ve bu yöntemlerin maturasyon üzerine etkilerinin araştırılmasıdır. Mezbahada kesilen hayvanların ovaryumlarından toplanan oositler stereomikroskop altında incelendi ve etrafı en az 3 kat sıkı kumulus hücreleriyle çevrili 450 oosit kullanıldı. Vitrifikasyon yöntemine göre OPS, SSV ve kontrol grubu olarak 3 grup oluşturuldu. OPS grubundaki oositler; %20 CS, %10 EG ve %10 DMSO içeren TCM199 medyumunda 30-45 sn bekletildi ve %20 CS, %20 EG, %20 DMSO ve 0.5M sükroz içeren TCM199 medyumunda 20 sn bekletilerek OPS yöntemiyle vitrifiye edildi. SSV grubundaki oositler; %20 CS ve %4 EG içeren TCM199 medyumunda 12-15 dk bekletildi ve %20 CS, %35 EG, %5 PVP ve 0.4 M trehaloz içeren TCM199 medyumunda 25-30 sn bekletilerek SSV yöntemiyle vitrifiye edildi. Vitrifiye edilen oositler, sıvı azot içerisinde en az 1 ay saklandıktan sonra çözdürülerek IVM'a alındı. Kontrol grubundaki oositler, vitrifiye edilmeksizin IVM'a alındı. IVM işlemi, %10 FCS, 5 µg/ml LH, 0.5 µg/ml FSH, 27.5 µg/ml Na-piruvat ve antibiyotik içeren TCM199 medyumu kullanılarak, 38.5°C'deki %5 CO2'li etüvde 24 saatte yapıldı. Maturasyon sonrasında kumulus ekspansiyonu incelendiğinde, OPS grubunda 146 oositten 118'inde (%80.82) 2 derecede, 22'sinde (%15.07) 1 derecede ve 6'sında (%4.11) 0 derecede kumulus ekspansiyonu gözlendi. SSV grubunda 144 oositten 113'ünde (%78.47) 2 derecede, 20'sinde (%13.89) 1 derecede ve 11'inde (%7.64) ise 0 derecede kumulus ekspansiyonu gözlendi. Kontrol grubunda 150 oositten 144'ünde (%96.00) 2 derecede, 4'ünde (%2.67) 1 derecede ve 2'sinde (%1.33) ise 0 derecede kumulus ekspansiyonu gözlendi. Soyulan oositlerde polar body incelendiğinde, OPS grubunda 138 oositten 32'sinde (%23.19) polar body bulunduğu, 96'sında (%69.56) polar body bulunmadığı ve 10 oositin (%7.25) ise dejenere olduğu belirlendi. SSV grubunda 134 oositten 28'inde (%20.90) polar body bulunduğu, 95'inde (%70.90) polar body bulunmadığı ve 11 oositin (%8.20) ise dejenere olduğu belirlendi. Kontrol grubunda 137 oositten 108'inde (%78.83) polar body bulunduğu, 25'inde (%18.25) polar body bulunmadığı ve 4 oositin (%2.92) ise dejenere olduğu belirlendi. OPS ve SSV grupları arasında önemli derecede bir fark bulunmadı (p˃0.05). Vitrifikasyon grupları, kontrol grubuna kıyasla önemli derecede düşük bulundu (p˂0.001). Çalışmanın sonucunda, immatür sığır oositlerinin OPS ve SSV vitrifikasyon yöntemleriyle vitrifiye edilebileceği gösterilmiştir.
Özet (Çeviri)
The purpose of this study; is freezing of immature bovine oocytes with vitrification methods of OPS and SSV and investigating the effects of these methods on maturation. The oocytes collected from the ovaries of the animals slaughtered in the local abattoir were examined under a stereomicroscope and 450 oocytes were used surrounded by at least 3 layers cumulus cells. According to the vitrification method, OPS, SSV and control groups were formed. Oocytes in the OPS group; were exposed TCM199 medium containing 20% CS, 10% EG and 10% DMSO for 30-45 seconds and vitrified by OPS method exposed TCM199 medium containing 20% CS, 20% EG, 20% DMSO and 0.5M sucrose for 20 seconds. Oocytes in the SSV group; were exposed TCM199 medium containing 20% CS and 4% EG for 12-15 minutes and vitrified by SSV method exposed TCM199 medium containing 20% CS, 35% EG, 5% PVP and 0.4 M trehalose for 25-30 seconds. The vitrified oocytes were thawed after storage in liquid nitrogen for at least 1 month and incubated for IVM. Oocytes in the control group were subjected to IVM without vitrified. The IVM procedure was performed in a 5% CO2 incubator at 38.5 ° C for 24 hours using IVM medium (TCM199 medium containing 10% FCS, 5 µg/ml LH, 0.5 µg/ml FSH, 27.5 µg/ml Na-pyruvate and antibiotics). When examined to cumulus expansion after maturation, in the OPS group, 118 (80.82%) of 146 oocytes are degree 2, 22 (15.07%) oocytes are degree 1 and 6 (4.11%) oocytes are degree 0 cumulus expansion. In the SSV group, 113 (78.47%) of 144 oocytes are degree 2, 20 (13.89%) oocytes are degree 1 and 11 (7.64%) oocytes are degree 0 cumulus expansion. In the control group, 144 (96.00%) of 150 oocytes are degree 2, 4 (2.67%) oocytes are degree 1 and 2 (1.33%) oocytes are degree 0 cumulus expansion. When examined the polar body in the denuded oocytes, in the OPS group, 32 (23.19%) of 138 oocytes had polar body, 96 (69.56%) oocytes had no polar body and 10 (7.25 %) oocytes were degenerated. In the SSV group, 28 (20.90%) of 134 oocytes had polar body, 95 (70.90%) oocytes had no polar body and 11 oocytes (8.20%) were degenerated. In the control group, 108 (78.83%) of 137 oocytes had polar body, 25 (18.25%) oocytes had no polar body and 4 (2.92%) oocytes were degenerated. There was no significant difference between OPS and SSV groups (p˃0.05). Vitrification groups were significantly lower than the control group (p˂0.001). The result of the study shows that immature bovine oocytes can be vitrified with OPS and SSV methods.
Benzer Tezler
- Değişik doku örneklerinin farklı saklama sürelerinde korunması ve vitrifikasyon yönteminin primer kültürler üzerine olan etkisinin farklı yöntemler uygulayarak araştırılması
Preservation of different tissue types at different time periods and investigation of effects of vitrification on primary cultures by using different methods
ARZU TAŞ ÇAPUTÇU
Doktora
Türkçe
2013
Bilim ve TeknolojiKocaeli ÜniversitesiHistoloji ve Embriyoloji Ana Bilim Dalı
DOÇ. DR. SÜHEYLA GONCA
PROF. DR. SEZEN ARAT
- İnsan adipoz dokusu ve adipoz kaynaklı mezenkimal kök hücrelerin doku mühendisliği uygulamalarında kullanılmak üzere kriyoprezervasyonunun optimizasyonu
Ortimization of cryopreservation protocols for adipose tissue and adipose tissue-derived mesenchymal stem cells and their potential use in tissue engineering
NECATİ FINDIKLI
Doktora
Türkçe
2014
BiyomühendislikYıldız Teknik ÜniversitesiBiyomühendislik Ana Bilim Dalı
PROF. DR. ADIL ALLAHVERDIYEV
- Farklı embriyo dondurma yöntemlerinin, embriyonik kök hücre belirteçlerinden NANOG, OCT4, SOX2 VE SSEA4 ekspresyonu üzerine etkileri
The effects of different cryopreservation techniques on the expression of Nanog, Oct4, Sox2 and SSEA-4
HATİCE İSAN
Yüksek Lisans
Türkçe
2016
Histoloji ve EmbriyolojiMaltepe ÜniversitesiKlinik Embriyoloji Ana Bilim Dalı
PROF. DR. RANAN GÜLHAN AKTAŞ
- Sequoia sempervirens (sahil sekoyası)'in kriyoprezervasyon yolu ile uzun süreli saklanması amacıyla tek aşamalı dondurma yöntemlerinin geliştirilmesi
Development of one ? step freezing techniques for the long - term storage of Sequoia sempervirens (coastal redwood) by cryopreservation
EMRAH KIRDÖK
Yüksek Lisans
Türkçe
2010
BiyolojiGebze Yüksek Teknoloji EnstitüsüBiyoloji Bölümü
YRD. DOÇ. DR. ELİF AYLİN ÖZÜDOĞRU
- Kordon kanı hücrelerinin saklanması
Banking of cord blood mononuclear cells
ÖZLEM TUĞÇE ÇİLİNGİR
Yüksek Lisans
Türkçe
2008
Hematolojiİstanbul ÜniversitesiHistoloji ve Embriyoloji Ana Bilim Dalı
PROF. DR. MUSTAFA TAŞYÜREKLİ